Інтегрована оцінка цитологічної картини та мікробіому піхви у вагітних із дисплазією епітелію шийки матки

Основний зміст сторінки статті

Л.І. Воробей
А.О. Сергієнко

Анотація

Питання дисплазії епітелію шийки матки (ДЕШМ) при вагітності не втрачає актуальності й потребує вдосконалення і стандартизації методів скринінгу, діагностики та ведення таких жінок.
Мета дослідження: встановити особливості цитологічної картини та мікробіоценозу піхви у вагітних із ДЕШМ.
Матеріали та методи. Основну групу становили 95 вагітних із ДЕШМ, контрольну – 80 жінок без ДЕШМ. Наявність або відсутність ДЕШМ діагностували за допомогою простої та розширеної кольпоскопії, а також результатів цитологічного дослідження. Дані кольпоскопії оцінювали за класифікацією Ріо-де-Жанейро. Цитологічне дослідження оцінювали за класифікаціями Всесвітньої організації охорони здоров’я (слабкий, помірний та тяжкий ступені), the Bethesda System (TBS), Папаніколау, Richart. Мікробіологічні дослідження здійснювали за методиками, що використовуються для виділення та ідентифікації мікроорганізмів. Кольпоцитологічне дослідження проводили шляхом цитологічного оцінювання матеріалу з бічної стінки піхви, що був зафіксований в суміші Нікіфорова та пофарбований поліхромним методом за Папаніколау, з урахуванням еозинофільного й каріопікнотичного індексів. Визначення інфікування вірусом папіломи людини (ВПЛ) виконували методом полімеразної ланцюгової реакції з детекцією результатів у режимі реального часу (rеаl time).
Результати. У вагітних із ДЕШМ, згідно з даними цитологічних і кольпоскопічних досліджень, переважає легкий ступінь дисплазії – цервікальна інтраепітеліальна неоплазія I (cervical intraepithelial neoplasia – CIN 1), що діагностовано у 73,7% жінок (LSIL / CIN 1); помірна (HSIL / CIN 2) та тяжка (HSIL / CIN 3) дисплазія спостерігається значно рідше –
у 22,1% та 4,2% відповідно (LSIL та HSIL – Low- та High-Grade Squamous Intraepithelial Lesion відповідно). У всіх вагітних із ДЕШМ виявляються високоонкогенні штами ВПЛ, найпоширенішими з яких є 16, 39 та 45 штами. У вагітних із ДЕШМ спостерігається зниження кількості типової грампозитивної паличкової флори та збільшення умовно-патогенних мікроорганізмів, як-от епідермального стафілокока (Epidermal Staphylococcus), кишкової палички (Escherichia coli), ентерокока (Enterococcus spp.), клебсієли (Klebsiella spp.), гарднерели (Gardnerella vaginalis) та грибів Candida spp. Кольпоцитологічне дослідження демонструє у жінок із ДЕШМ переважання прекорніфікаційних і корніфікаційних (естрогенних) типів при високих значеннях еозинофільних та каріопікнотичних індексів (понад 10, а в разі тяжкої дисплазії – більше ніж 50), що вказує на загрозу переривання вагітності. Перебіг вагітності у жінок із ДЕШМ частіше ускладнюється такими станами, як істміко-цервікальна недостатність (7,3%), викиднями у ІІ триместрі (2,1%), загрозою передчасних пологів (22,1%). Передчасні пологи відбуваються у 4,2% жінок, допологовий розрив плодових оболонок –
у 23,1%, хоріоамніоніт – у 3,1%; 9,5% дітей народжуються в стані асфіксії, 4,2% – з низькою вагою. Загалом перинатальні ускладнення відзначені у 28 (29,4%) пацієнток із ДЕШМ проти 8 (10,0%) жінок контрольної групи (р < 0,05).
Висновки. Жінки з ДЕШМ потребують поетапного мікробіологічного, ендокринологічного, цитологічного, кольпо-
скопічного і кольпоцитологічного обстеження та (за його результатами) відповідної корекції виявлених змін. Висока частота перинатальних ускладнень при ДЕШМ потребує розробки комплексу профілактичних заходів.

Блок інформації про статтю

Як цитувати
Воробей, Л., & Сергієнко, А. (2025). Інтегрована оцінка цитологічної картини та мікробіому піхви у вагітних із дисплазією епітелію шийки матки. Репродуктивне здоров’я жінки, (6), 137–145. https://doi.org/10.30841/2708-8731.6.2025.341015
Номер
Розділ
АКУШЕРСТВО

Посилання

Amabebe E, Ogidi H, Anumba DO. Matrix metalloproteinase-induced cervical extracellular matrix remodelling in pregnancy and cervical cancer. Reprod Fertil. 2022;3(3):177-91. doi: 10.1530/RAF-22-0015.

Mashyr N. Prophylaxis of miscarriage for women with pathology of cervix in anamnesis. Perinatol Reproductol Res Pract. 2023;2(4):14-22. doi: 10.52705/2788-6190-2022-04-2.

Arbyn M, Weiderpass E, Bruni L, de Sanjosé S, Saraiya M, Ferlay J, et al. Estimates of incidence and mortality of cervical cancer in 2018: A worldwide analysis. Lancet Glob Health. 2020;8(2):191-203. doi: 10.1016/S2214-109X(19)30482-6.

Bray F, Laversanne M, Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Soerjomataram I, et al. Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2024;74(3):229-63. doi: 10.3322/caac.21834.

Saraiya M, Kwan A, Cooper CP. Primary HPV testing: U.S. women’s awareness and acceptance of an emerging screening modality. Prev Med. 2018;108:111-4. doi: 10.1016/j.ypmed.2017.12.007.

Wolf J, Kist LF, Pereira SB, Quessada MA, Petek H, Pille A, et al. Human papillomavirus infection: Epidemiology, biology, host interactions, cancer development, prevention, and therapeutics. Rev Med Virol. 2024;34(3):e2537. doi: 10.1002/rmv.2537.

Gu J, Fu CY, Ng BK, Liu LB, Lim-Tan SK, Lee CG. Enhancement of early cervical cancer diagnosis with epithelial layer analysis of fluorescence lifetime images. PLoS One. 2015;10(5):e0125706. doi: 10.1371/journal.pone.0125706.

Nayar R, Wilbur DC. The Bethesda System for Reporting Cervical Cytology: A Historical Perspective. Acta Cytol. 2017;61(4-5):359-72. doi: 10.1159/000477556.

Torres-Ibarra L, Cuzick J, Lorincz AT, Spiegelman D, Lazcano-Ponce E, Franco EL, et al. Comparison of HPV-16 and HPV-18 genotyping and cytological testing as triage testing within human papillomavirus-based screening in Mexico. JAMA Netw Open. 2019;2(11):e1915781. doi: 10.1001/jamanetworkopen.2019.15781.

Yang H, Hao Y, Niu M, Zheng J, Jia X, Zhang S, et al. Comparative study of triage strategies for women with atypical squamous cells of undetermined significance in the post-vaccine era. Front Oncol. 2024;14:1416116. doi: 10.3389/fonc.2024.1416116.

Perkins RB, Guido RS, Castle PE, Chelmow D, Einstein MH, Garcia F, et al. 2019 ASCCP risk-based management consensus guidelines for abnormal cervical cancer screening tests and cancer precursors. J Low Genit Tract Dis. 2020;24(2):102-31. doi: 10.1097/LGT.0000000000000525.

Klügel S, Lücke C, Mehren A, Malik E, Philipsen A, Schild-Suhren M, et al. Patients with cervical intraepithelial neoplasms show different states of health-related quality of life and different coping styles depending on the choice of therapy: findings from the CIN study. Int J Womens Health. 2019;11:511-7. doi: 10.2147/IJWH.S208257.

Bruckner T, Dinkic C, Hoffmann J, Dornhöfer N, Seitz S, Sohn C, et al. Impact of a cervical dysplasia and its treatment on quality of life and sexual function. Arch Gynecol Obstet. 2018;298(4):737-45. doi: 10.1007/s00404-018-4853-y.

Huang R, Liu Z, Sun T, Zhu L. Cervicovaginal microbiome, high-risk HPV infection and cervical cancer: Mechanisms and therapeutic potential. Microbiol Res. 2024;287:127857. doi: 10.1016/j.micres.2024.127857.

Peng Y, Tang Q, Wu S, Zhao C. Associations of Atopobium, Garderella, Megasphaera, Prevotella, Sneathia, and Streptococcus with human papillomavirus infection, cervical intraepithelial neoplasia, and cancer: A systematic review and meta-analysis. BMC Infect Dis. 2025;25(1):708. doi: 10.1186/s12879-025-10851-4.

Zhou Z, Feng Y, Xie L, Ma S, Cai Z, Ma Y. Alterations in gut and genital microbiota associated with gynecological diseases: a systematic review and meta-analysis. Reprod Biol Endocrinol. 2024;22(1):13. doi: 10.1186/s12958-024-01184-z.

Landlinger C, Tisakova L, Oberbauer V, Schwebs T, Muhammad A, Latka A, et al. Engineered phage endolysin eliminates gardnerella biofilm without damaging beneficial bacteria in bacterial vaginosis ex vivo. Pathogens. 2021;10(1):54. doi: 10.3390/pathogens10010054.

Dasgupta S. The Fate of Cervical Dysplastic Lesions during Pregnancy and the Impact of the Delivery Mode: A review. Cureus. 2023;15(7):e42100. doi: 10.7759/cureus.42100.

Makepeace LM, Spirtos AN, Nambiar A, Rodriguez AN, Duryea E, Spong CY, et al. 59 Prognosis of cervical cancer when diagnosed during pregnancy. Gynecologic Oncology Reports. 2023;48(1):30-1. doi: 10.1016/S2352-5789(23)00280-1.

Rueckert S, Oestreich K, Gallwas J, Kolben T, Ditsch N, Starrach T, et al. Cervical dysplasia during pregnancy-Effects on oncological and psychological outcome: A case control study. EJGO. 2018;39(3):399-403.

Stuebs FA, Mergel F, Koch MC, Dietl AK, Schulmeyer CE, Adler W, et al. Cervical intraepithelial neoplasia grade 3: Development during pregnancy and postpartum. Arch Gynecol Obstet. 2023;307(5):1567-72. doi: 10.1007/s00404-022-06815-7.

Balan TA, Balan RA, Socolov D, Gheorghiță VR, Buțureanu TA, Păvăleanu I, et al. Pregnancy-related precancerous cervical lesions: Pathogenesis, diagnosis, evolution, and impact upon gestation and fertility. J Clin Med. 2024;13(22):6718. doi: 10.3390/jcm13226718.

He W, Sparén P, Fang F, Sengpiel V, Strander B, Czene K. Pregnancy outcomes in women with a prior cervical intraepithelial neoplasia grade 3 diagnosis: a nationwide population-based cohort study with sibling comparison design. Ann Intern Med. 2022;175(2):210-8. doi: 10.7326/M21-2793.

Loopik DL, van Drongelen J, Bekkers RLM, Voorham QJM, Melchers WJG, Massuger LFAG, et al. Cervical intraepithelial neoplasia and the risk of spontaneous preterm birth: A Dutch population-based cohort study with 45,259 pregnancy outcomes. PLoS Med. 2021;18(6):e1003665. doi: 10.1371/journal.pmed.1003665.

Khayargoli P, Mayrand M-H, Niyibizi J, Audibert F, Laporte L, Lacaille J, et al. Association between Human Papillomavirus 16 Viral Load in Pregnancy and Preterm Birth. Viruses. 2024;16(2):298. doi: 10.3390/v16020298.

Lantsman T, Seagle BL, Yang J, Margul DJ, Thorne-Spencer J, Miller ES, et al. Association between cervical dysplasia and adverse pregnancy outcomes. Am J Perinatol. 2020;37(9):947-54. doi: 10.1055/s-0039-1692183.

Mitra A, MacIntyre DA, Ntritsos G, Smith A, Tsilidis KK, Marchesi JR, et al. The vaginal microbiota associates with the regression of untreated cervical intraepithelial neoplasia 2 lesions. Nat Commun. 2020;11(1):1999. doi: 10.1038/s41467-020-15856-y.

Kim JY, Shim JY. Cervical intraepithelial neoplasia and cervical cytology in pregnancy. J Pathol Transl Med. 2024;58(6):283-90. doi: 10.4132/jptm.2024.10.17.

Maarsingh JD, Łaniewski P, Herbst-Kralovetz MM. Immunometabolic and potential tumor-promoting changes in 3D cervical cell models infected with bacterial vaginosis-associated bacteria. Commun Biol. 2022;5(1):725. doi: 10.1038/s42003-022-03681-6.

Brusselaers N, Shrestha S, van de Wijgert J, Verstraelen H. Vaginal dysbiosis and the risk of human papillomavirus and cervical cancer: systematic review and meta-analysis. Am J Obstet Gynecol. 2019;221(1):9-18.e8. doi: 10.1016/j.ajog.2018.12.011.

Kwasniewski W, Wolun-Cholewa M, Kotarski J, Warchol W, Kuzma D, Kwasniewska A, et al. Microbiota dysbiosis is associated with HPV-induced cervical carcinogenesis. Oncol Lett. 2018;16(6):7035-47. doi: 10.3892/ol.2018.9509.

Martins BCT, Guimarães RA, Alves RRF, Saddi VA. Bacterial vaginosis and cervical human papillomavirus infection in young and adult women: a systematic review and meta-analysis. Rev Saude Publica. 2023;56:113. doi: 10.11606/s1518-8787.2022056004412.

Kyrgiou M, Athanasiou A, Kalliala IEJ, Paraskevaidi M, Mitra A, Martin-Hirsch PP, et al. Obstetric outcomes after conservative treatment for cervical intraepithelial lesions and early invasive disease. Cochrane Database Syst Rev. 2017;11(11):CD012847. doi: 10.1002/14651858.CD012847.

Niyibizi J, Mayrand MH, Audibert F, Monnier P, Brassard P, Laporte L, et al. Association between human papillomavirus infection among pregnant women and preterm birth. JAMA Netw Open. 2021;4(9):e2125308. doi: 10.1001/jamanetworkopen.2021.25308.