Молекулярна діагностика виявлення вірусу краснухи (генотип 1E) у клінічних зразках вагітних жінок і його зв’язок із самовільними викиднями
Бічна панель сторінки статті
Основний зміст сторінки статті
Анотація
Вагітні, хворі на краснуху, потенційно можуть передавати інфекцію своїй майбутній дитині. Інфікування вірусом краснухи може призвести до викидня, мертвонародження та синдрому вродженої краснухи. Єдиний представник роду Rubivirus родини Togaviridae, вірус краснухи є одноланцюговим РНК-вірусом iз позитивною полярністю, оточений ліпопротеїновою оболонкою з шипоподібними поверхневими виступами, що містять гемаглютинін.
Мета дослідження: визначення вірусу краснухи (генотип 1Е) у вагітних і встановлення його значення у виникненні самовільних викиднів.
Матеріали та методи. Обстежено 174 жінки, які спостерігались в Al-Elweya Teaching Hospital (Багдад, Ірак) за трьома критеріями: жінки, які в анамнезі мали самовільний викидень, жінки зі звичним невиношуванням вагітності (звичні викидні) та жінки без втрат вагітності, які входили до групи серологічного контролю. Вік жінок, інфікованих вірусом краснухи, коливався від 17 до 45 років. Для виявлення вірусу краснухи використовували два методи: серологічні тести (IgM та IgG до антигенів вірусу краснухи) та молекулярну діагностику (виявлення штамів вірусу краснухи за допомогою полімеразної ланцюгової реакції зі зворотною транскрипцією).
Результати. Встановлено, що у 55 жінок відбувся самовільний викидень. У віковій групі 25–29 років зафіксовано (33,33%) суттєве збільшення (p ≤ 0,05) випадків підозр на інфікування вірусом краснухи порівняно з іншими групами. У цій же віковій групі спостерігалося вірогідне збільшення кількості жінок, які перенесли викидень (23,64%), порівняно з іншими віковими групами. Рівні IgM та IgG до антигенів вірусу краснухи були значуще підвищеними (p ≤ 0,01) у 32,95% пацієнток у тій же віковій групі. У цьому дослідженні 23 жінки мали звичне невиношування вагітності (викидні). Серед жінок 25–29 років звичні викидні відбулись у 26,09%. Серед усіх обстежених у 10 пацієнток виявлено вади плода.
Висновки. Чутливість, специфічність і точність тесту імуноферментного аналізу для ідентифікації вірусу краснухи були нижчими, ніж при використанні методу полімеразної ланцюгової реакції зі зворотною транскрипцією для виявлення вірусу краснухи, а загальний рівень антитіл IgM був більш поширеним у пацієнток, які перенесли викидень. Крім того, це дослідження продемонструвало високу захворюваність на краснуху, спричинену генотипом 1E, та її зв’язок із викиднями.
Блок інформації про статтю
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
Xu J, Kong J, Lyu B, Wang X, Qian Q, Zhou X, et al. The Capsid Protein of Rubella Virus Antagonizes RNA Interference in Mammalian Cells. Viruses. 2021;13(2):154. doi: 10.3390/v13020154.
Nedeljkovic J, Jovanovic T, Oker-Blom C. Maturation of IgG avidity to individual rubella virus structural proteins. J Clin Virol. 2001;22(1):47-54. doi: 10.1016/s1386-6532(01)00161-5.
Al-Mughales J, Al-Rabia MW. Antenatal Screening for Toxoplasmosis and Rubella in Saudi Arabia: Assessing the Need for Screening. J Multidiscip Healthc. 2023;16:3897-905. doi: 10.2147/JMDH.S438895.
Mangga HK, Aminu M, Inabo H. Seroprevalence of Rubella Specific IgG Antibody among Pregnant Women Attending Ante-Natal Clinics in Kaduna Metropolis, Nigeria. Nigerian J Basic Appl Sci. 2014;4:63-6.
Fappani C, Gori M, Bianchi S, Terraneo M, Bilardi E, Colzani D, et al. Differential diagnosis of fever and rash cases negative for measles and rubella to complement surveillance activities. J Med Virol. 2023;95(10):e29141. doi: 10.1002/jmv.29141.
Hyle EP, Rao SR, Bangs AC, Gastañaduy P, Fiebelkorn AP, Hagmann SHF, et al. Clinical Practices for Measles-Mumps-Rubella Vaccination Among US Pediatric International Travelers. JAMA Pediatr. 2020;174(2):e194515. doi: 10.1001/jamapediatrics.2019.4515.
Toptygina A, Grebennikov D, Bocharov G. Prediction of Specific Antibody- and Cell-Mediated Responses Using Baseline Immune Status Parameters of Individuals Received Measles-Mumps-Rubella Vaccine. Viruses. 2023;15(2):524. doi: 10.3390/v15020524.
Sakuragi S, Liao H, Yajima K, Fujiwara S, Nakamura H. Rubella Virus Triggers Type I Interferon Antiviral Response in Cultured Human Neural Cells: Involvement in the Control of Viral Gene Expression and Infectious Progeny Production. Int J Mol Sci. 2022;23(17):9799. doi: 10.3390/ijms23179799.
Akib M, Muhiddin HS, Ichsan AM, Maharani RN. mRNA Expression of PITX3 gene in Congenital Cataract Caused by Rubella Virus Infection. Indian J Foren Med Toxicol. 2020;14(4):690.
Bonner KE, Sukerman E, Liko J, Lanzieri TM, Sutton M, DeBess E, et al. Case report: Persistent shedding of a live vaccine-derived rubella virus in a young man with severe combined immunodeficiency and cutaneous granuloma. Front Immunol. 2022;13:1075351. doi: 10.3389/fimmu.2022.1075351.
Andriatahina TN, Ravaoarisoa L, Ranivoson A, Rahajamanana V, Randriananahirana Z, Andrianirinarison J, et al. Epidemio-clinical aspects of congenital rubella syndrome in Madagascar. Inter J Res Med Sci. 2020;2:424.
Wang S, Liang B, Wang W, Li L, Feng N, Zhao Y, et al. Viral vectored vaccines: design, development, preventive and therapeutic applications in human diseases. Signal Transduction Targeted Ther. 2023;149.
Huang Y, Wu R, He J, Xiang Y. Evaluating ChatGPT-4.0’s data analytic proficiency in epidemiological studies: A comparative analysis with SAS, SPSS, and R. J Glob Health. 2024;14:04070. doi: 10.7189/jogh.14.04070.
Tushabe P, Bakamutumaho B, Eliku JP, Birungi M, Aine F, Namuwulya P, et al. Rubella virus genotype 2B endemicity and related utility of serum-based molecular characterization in Uganda. BMC Res Notes. 2023;16(1):218. doi: 10.1186/s13104-023-06499-5.
Armah NB, Sagoe KW, Nuamah M, Yawson AE, Nartey ET, Essuman VA, et al. Rubella virus IgM and IgG antibodies with avidity in pregnant women and outcomes at a tertiary facility in Ghana. PLoS One. 2022;17(12):e0279733. doi: 10.1371/journal.pone.0279733.
Hiebert J, Saboui M, Frost JR, Zubach V, Laverty M, Severini A. Mumps resurgence in a highly vaccinated population: Insights gained from surveillance in Canada, 2002–2020. Vaccine. 2023;41(25):3728-39. doi: 10.1016/j.vaccine.2023.04.078.
Masresha B, Shibeshi M, Kaiser R, Luce R, Katsande R, Mihigo R. Congenital Rubella Syndrome in The African Region – Data from Sentinel Surveillance. J Immunol Sci. 2018 Aug 2;Suppl:146-150.
Blader IJ, Coleman BI, Chen CT, Gubbels MJ. Lytic Cycle of Toxoplasma gondii: 15 Years Later. Annu Rev Microbiol. 2015;69:463-85. doi: 10.1146/annurev-micro-091014-104100.
Alirol E, Getaz L, Stoll B, Chappuis F, Loutan L. Urbanisation and infectious diseases in a globalised world. Lancet Infect Dis. 2011;11(2):131-41. doi: 10.1016/S1473-3099(10)70223-1.
Smith NC, Goulart C, Hayward JA, Kupz A, Miller CM, van Dooren GG. Control of human toxoplasmosis. Int J Parasitol. 2021;51(2-3):95-121. doi: 10.1016/j.ijpara.2020.11.001.
Sen MR, Shukla BN, Tuhina B. Prevalence of Serum Antibodies to TORCH Infection in and Around Varanasi, Northern India. J Clin Diagn Res. 2012;6(9):1483-5. doi: 10.7860/JCDR/2012/4550.2538.
Zhylka NY, Pedachenko NY, Shcherbinska OS, Gruzieva TS, Pakharenko LV. Improvement of the health services for the prevention of hiv transmission from mother to child at the level of primary health care. Wiad Lek. 2022;75(10):2507-13. doi: 10.36740/WLek202210136.
Kijlstra A, Jongert E. Control of the risk of human toxoplasmosis transmitted by meat. Int J Parasitol. 2008;38(12):1359-70. doi: 10.1016/j.ijpara.2008.06.002.
Voordouw B, Rockx B, Jaenisch T, Fraaij P, Mayaud P, Vossen A, et al. Performance of Zika Assays in the Context of Toxoplasma gondii, Parvovirus B19, Rubella Virus, and Cytomegalovirus (TORCH) Diagnostic Assays. Clin Microbiol Rev. 2019;33(1):e00130-18. doi: 10.1128/CMR.00130-18.
Shields BE, Perelygina L, Samimi S, Haun P, Leung T, Abernathy E, et al. Granulomatous Dermatitis Associated With Rubella Virus Infection in an Adult With Immunodeficiency. JAMA Dermatol. 2021;157(7):842-7. doi: 10.1001/jamadermatol.2021.1577.
Korchynska О, Baloga O. The experience of pregnancy management by suspicion of fetal intrauterine infection in Ukraine and other countries. Reprod Health Woman. 2021;7-8:28-33. doi: 10.30841/2708-8731.7-8.2021.250828.
Sirin MC, Agus N, Yilmaz N, Bayram A, Derici YK, Samlioglu P, et al. Seroprevalence of Toxoplasma gondii, Rubella virus and Cytomegalovirus among pregnant women and the importance of avidity assays. Saudi Med J. 2017;38(7):727-32. doi: 10.15537/smj.2017.7.18182.
Hill D, Dubey JP. Toxoplasma gondii: transmission, diagnosis and prevention. Clin Microbiol Infect. 2002;8(10):634-40. doi: 10.1046/j.1469-0691.2002.00485.x.
Cutts FT, Vynnycky E. Modelling the incidence of congenital rubella syndrome in developing countries. Int J Epidemiol. 1999;28(6):1176-84. doi: 10.1093/ije/28.6.1176.
Mirambo M, Nyawale H, Michael F, Mamba P, Hassan K, Ali H, et al. The Susceptibility to Rubella Virus Infection among Pregnant Women Attending Antenatal Clinics in Unguja, Zanzibar: The Need to Employ Multiple Strategies to Control Congenital Rubella Syndrome in Tanzania. Inter J Tropical Dis Health. 2023;24:41-8.
Perelygina L, Icenogle J, Sullivan KE. Rubella virus-associated chronic inflammation in primary immunodeficiency diseases. Curr Opin Allergy Clin Immunol. 2020;20(6):574-81. doi: 10.1097/ACI.0000000000000694.
Bouthry E, Perillaud-Dubois C, Lebraud P, Soutière MP, Grangeot-Keros L, Vauloup-Fellous C. Positive predictive value of seroconversion or positive rubella IgM in diagnosis of maternal rubella infection: Seven-years review of French National Reference Laboratory for Rubella. J Clin Virol. 2021;134:104708. doi: 10.1016/j.jcv.2020.104708.
Al-Jumaily RM, AL-Sheakli II, Muhammed HJ, Al-Rubaii BA. Gene expression of Interleukin-10 and Foxp3 as critical biomarkers in rheumatoid arthritis patients. Biomedicine. 2023;43(4):1183-7. doi: 10.51248/.v43i4.3107.
Sabah FS, Noori HZ, Abdul-elah BW, Abdullah Laftaah AL, Rubaii B. Identification of methicillin-resistant strains of Staphylococcus aureus isolated from hu- mans and food sources by Use of mecA 1 and mecA 2 genes in Pulsed-field gel electrophoresis (PFGE technique). Revis Bionatura. 2022;7(2):44. doi: 10.21931/RB/2022.07.02.44.
Sultan RS, Al Khayali BD, Abdulmajeed GM, Al-Rubaii BA. Exploring small nucleolar RNA host gene 3 as a therapeutic target in breast cancer through metabolic reprogramming. Opera Medica Physiol. 2023;10(4):36-47. doi: 10.24412/2500-2295-2023-4-36-47.
Bassi AG, Al-Rubaii BA. Detection of pyocin S and the effects of lactobacillus acidophilus cell-free supernatants on multi-drug resistant Pseudomonas aeruginosa isolated from patients of Baghdad Hospitals. Journal of Communicable Diseases. 2024;56(1):135-44.
Husain AG, Alrubaii BA. Molecular detection and expression of virulence factor encoding genes of Pseudomonas aeruginosa isolated from clinical samples. Biomedicine. 2023 Nov 9;43(5):1514-9.
Muhsin HY, Al-Humairi RM, Alshareef DQ, Ad’hiah AH. Interleukin-22 is up-regulated in serum of male patients with ankylosing spondylitis. Egypt Rheumatol. 2022;44(4):351-5. doi: 10.1016/j.ejr.2022.07.002.
Bresam S, Alhumairi RM, Hade IM, Al-Rubaii BA. Genetic mutation rs972283 of the KLF14 gene and the incidence of gastric cancer. Biomedicine. 2023;43(4):1256-60. doi: 10.51248/.v43i4.3112.
Abdulkaliq AH, Hammed ZN, Hamzah SS, Saleh TH, Al-Rubaii BA. Molecular identification of intracellular survival related Brucella melitensis virulence factors. Biomedicine. 2022;42(4):761-5. doi: 10.51248/.v42i4.1642.
Saleh TH, Hashim ST, Abdulrazaq Al-Obaidi RA, AL-Rubaii BA. A biological study of chitinase produced by clinical isolates of pseudomonas aeruginosa and detection of chia responsible gene. Inter J Res Pharm Sci. 2020;11(2):1318-30.
Ibrahim GJ, Laftaah BA. The Efficiency of Certain Amino Acids in Regulating chABCI Gene Expression in Proteus mirabilis. Iraqi J Sci. 2024;65(9):4983-92. doi: 10.24996/ijs.2024.65.9.15.
Hamoode RH, Alkubaisy SA, Sattar DA, Hamzah SS, Saleh TH, Al-Rubaii BA. Detection of anti-testicular antibodies among infertile males using indirect immunofluorescent technique. Biomedicine. 2022;42(5):978-82. doi: 10.51248/.v42i5.1963.
Hassoon AH. Evaluating the role of mitochondrial DNA quantification inblastocyst transfers potential. AIP Conf Proc. 2022;2386(1):020046. doi: 10.1063/5.0067093.
Abdullah MM, AL-Rubaii BA. Effect of Lactobacillus supernatant on swarming-related gene expression in Proteus mirabilis isolated from urinary tract infections. Ukrainian Journal of Nephrology and Dialysis. 2024;84(4):39-48.