Морфологічні зміни тканини ендометрія у жінок з безпліддям, які перенесли коронавірусну хворобу
Бічна панель сторінки статті
Основний зміст сторінки статті
Анотація
Мета дослідження: встановлення морфологічних змін у зразках ендометрія в жінок з діагнозом безпліддя та перенесеним постковідним синдромом.
Матеріали та методи. Обстежено 80 жінок, у яких діагностовано безпліддя з анамнезом перенесеного постковідного синдрому, а також 40 жінок з безпліддям без перенесеного COVID-19.
У всіх пацієнток проведено забір зразків ендометрія в середній проліферативній та середній секреторній фазах (у різних менструальних циклах) шляхом пайпель-біопсії або під час офісної гістероскопії з наступним проведенням гістологічного та імуногістохімічного дослідження. Для імунотипування використано антитіла до ангіотензинперетворювального фермента-2 (angiotensin-converting enzyme-2 – ACE2), SARS-CoV-2, CD138, CD56.
Результати. У жінок з безпліддям та анамнезом постковідного синдрому під час вивчення зразків ендометрія середньої проліферативної фази частіше виявляють плазматичні клітини (р = 0,027), лімфогістіоцитарну інфільтрацію (р = 0,003), ділянки фіброзованої строми (р = 0,031), а в біозразках середньої секреторної фази – слабко розвинену строму (р = 0,033), плазматичні клітини (р = 0,029). При проведенні імуногістохімічного дослідження в обох когортах відзначали підвищення експресії білка АСЕ2 у середній секреторній фазі.
У зрізах слизової оболонки матки, як проліферативної, так і секреторної фази, у пацієнток обох когорт відзначали експресію імуномаркера CD138, але в середній секреторній фазі частіше виявляли ознаки експресії ендометріальних гранулоцитів у жінок, у яких діагностовано безпліддя з анамнезом перенесеного постковідного синдрому (p=0,032). Не спостерігалось експресії антитіл до SARS-CoV-2 у зразках ендометрія пацієнток, які перехворіли на коронавірусну хворобу.
Висновки. Для жінок з безпліддям та перенесеним постковідним синдромом основними морфологічними ознаками у відібраних зразках ендометрія були наявність плазматичних клітин в обох фазах менструального циклу, лімфогістіоцитарна інфільтрація строми, ділянки фіброзу стромального компонента в середній проліферативній фазі, порушення децидуалізації та експресія ендометріальних гранулоцитів у середній секреторній фазі, а також відсутність експресії імуномаркера SARS-CoV-2.
Блок інформації про статтю
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
Maltezou HC, Pavli A, Tsakris A. Post-COVID Syndrome: An Insight on Its Pathogenesis. Vaccines. 2021;(9):497. doi: 10.3390/vaccines9050497.
Antoniou KM, Vasarmidi E, Russell AM, Andrejak C, Crestani B, Delcroix M, et al. European Respiratory Society statement on long COVID follow-up. Eur Respiratory J. 2022;60:2102174. doi: 10.1183/13993003.02174-2021.
Oronsky B, Larson C, Hammond TC, Oronsky A, Kesari S, Lybeck M, et al. A Review of Persistent Post-COVID Syndrome (PPCS). Clin Rev Allergy Immunol. 2021;64:66-74. doi: 10.1007/s12016-021-08848-3.
Kindrativ EO, Vasylyk VM, Matskevych VM, Kostyuk VM, Semchenko VA, et al. Retrospective analysis of coronavirus disease lethal cases. Physiol J. 2021;67:76-85. doi: 10.15407/fz67.04.076.
Matskevych V, Kamyshnyi O, Vasylyk VM, Grynovska MB, Lenchuk T, Fishchuk R, et al. Morphological prediction of lethal outcomes in the evaluation of lung tissue structural changes in patients on respiratory support with СOVID-19: Ukrainian experience. Pathol Res Prac. 2023;245:154471. doi: 10.1016/j.prp.2023.154471.
Mytsyk Y. 2019-nCoV pandemic: impact on reproductive health. Proc Shevchenko Scie Soc. 2020;59:82-4. doi: 10.25040/ntsh2020.01.13.
Ostafiichuk S, Prudnikov P, Motsyuk Y. Impact of COVID-19 on clinical symptoms in women with genital endometriosis. Perinatol Reproductol: Res Prac. 2022;(2):50-7. doi: 10.52705/2788-6190-2022-01-5.
Turyanytsia SM, Loya NO, Korchynska OO, Sabovа AV, Malyar VV. COVID-19 as a multidisciplinary problem: impact on reproductive health (Literature review). Reprod Health Woman. 2023;(7):74-9. doi: 10.30841/2708-8731.7.2023.292604.
Zhabchenko IA, Lishchenko IS, Bondarenko OM, Kovalenko TM. The influence of the coronavirus disease transmitted during pregnancy on the course of gestation and changes in the main biotopes of a woman’s organism. Reprod Health Woman. 2023;(5):20-7. doi: 10.30841/2708-8731.5.2023.286765.
Szukiewicz D, Wojdasiewicz P, Watroba M, Szewczyk G. Mast Cell Activation Syndrome in COVID-19 and Female Reproductive Function: Theoretical Background vs. Accumulating Clinical Evidence. J Immunol Res. 2022:1-22. doi: 10.1155/2022/9534163.
Batiha GES, Al-kuraishy HM, Al-Gareeb AI, Welson NN. Pathophysiology of Post-COVID syndromes: a new perspective. Virol J. 2022;(19):158. doi: 10.1186/s12985-022-01891-2.
Lee W, Mok A, Chung JP. Potential effects of COVID-19 on reproductive systems and fertility; assisted reproductive technology guidelines and considerations: a review. Hong Kong Med J. 2021:118-26. doi: 10.12809/hkmj209078.
Jing Y, Run-Qian L, Hao-Ran W, Hao-Ran C, Ya-Bin L, Yang G, et al. Potential influence of COVID-19/ACE2 on the female reproductive system. Mol Hum Reprod. 2020;(26):367-73. doi: 10.1093/molehr/gaaa030.
Smruthi CR, Rekha R, Manjula B, Prashanth S, Lepakshi BG. COVID-19: Maternal deaths in the tertiary health care center. Reprod Health Woman. 2023;(3):7-12. doi: 10.30841/2708-8731.3.2023.283318.
Savchuk TV. Pathomorphological changes of the placenta in antenatal asphyxia of the fetus associated with the coronavirus disease (COVID-19) in pregnant women. Reprod Health Woman. 2023;(3):44-51. doi: 10.30841/2708-8731.3.2023.283322.
Henarejos-Castillo I, Devesa-Peiro A, de Miguel-Gomez L, Sebastian-Leon P, Romeu M, Aleman A, et al. Predicted COVID-19 molecular effects on endometrium reveal key dysregulated genes and functions. Mol Hum Reprod. 2022:28. doi: 10.1093/molehr/gaac035.
Ministry of Health of Ukraine. On approval of the Procedure for the use of assisted reproductive technologies in Ukraine [Internet]. 2013. Order № 787; 2013 Sep 09. Available from: https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z1697-13#Text.
Ministry of Health of Ukraine. New clinical protocols [Internet]. 2016. Order № 1422; 2016 Dec 29. Available from: https://guidelines.moz.gov.ua/?fbclid=IwAR3Lz_a3yd8Y0r9a-HVVb7M33U1emjSh_VJ9gFcpl7BUCgAinIuSSEPTie0.
Ministry of Health of Ukraine. Protocol for providing rehabilitation care to patients with COVID-19 and convalescents [Internet]. 2021. Order № 771; 2021 Apr 20. Available from: https://www.dec.gov.ua/wp-content/uploads/2021/04/2021_771_covid19_ rehabilit.pdf.
Kliman HJ. Noyes, Hertig, and Rock revisited. F S Rep. 2020;1(1):2-4. doi: 10.1016/j.xfre.2020.04.004.
Ekemen S, Comunoglu C, Kayhan CK, Bilir E, Cavusoglu I, Etiler N, et al. Endometrial Staining of CD56 (Uterine Natural Killer), BCL-6, and CD138 (Plasma Cells) Improve Diagnosis and Clinical Pregnancy Outcomes in Unexplained Infertility and Recurrent IVF Failures: Standardization of Diagnosis with Digital Pathology. Diagnostics. 2023;(13):1557. doi: 10.3390/diagnostics13091557.
Herlihy NS, Klimczak AM, Titus S, Scott C, Hanson BM, Kim JK, et al. The role of endometrial staining for CD138 as a marker of chronic endometritis in predicting live birth. J Assisted Reprod Gen. 2022;39:473-9. doi: 10.1007/s10815-021-02374-z.
Chadchan SB, Popli P, Maurya VK, Kommagani R. The SARS-CoV-2 receptor, angiotensin-converting enzyme 2, is required for human endometrial stromal cell decidualization. Biol Reprod. 2020;104:336-43. doi: 10.1093/biolre/ioaa211.
de Miguel-Gómez L, Sebastián-León P, Romeu M, Pellicer N, Faus A, Pellicer A, et al. Endometrial gene expression differences in women with coronavirus disease 2019. Fertility Sterility. 2022;118:1159-69. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.09.013.
Haouzi D, Entezami F, Tuaillon E, Gala A, Ferrières-Hoa A, Brouillet S, et al. SARS-CoV-2 and Implantation Window: Gene Expression Mapping of Human Endometrium and Preimplantation Embryo. Life. 2021;(11):1378. doi: 10.3390/life11121378.
Rageh KEA, Farag EA, Behery MA, Badreldin MA, Ali EA. The Impact of Previous Exposure to COVID-19 on the Outcome of ICSI Cycles. JBRA Assisted Reprod. 2023;27(3):367-72. doi: 10.5935/1518-0557.20220063.
Iarova I. The role of CD138 immunohistochemical marker in the diagnosis of chronic endometritis: causes of female infertility. Futurity Med. 2024;3(1):27-37. doi: 10.57125/FEM.2024.03.30.03.
Romanenko TG, Haiduk AD. Immunomorphological signs of chronic endometritis in patients after failed attempts of auxiliary reproductive technologies. Reprod Health Woman. 2022;(3):27-33. doi: 10.30841/2708-8731.3.2022.262368.
Kosei NV, Tatarchuk TF, Vetokh NV, Vasylchenko LA. Current global trends in the study of etiology, pathogenesis, diagnosis and treatment of chronic endometritis. Reprod Health Woman. 2023;(5):7-12. doi: 10.30841/2708-8731.5.2023.286763.
Safarova AF. The features of endometrial receptivity in women underwent in vitro fertilization procedure. Reprod Health Woman. 2024;(3):104-8. doi: 10.30841/2708-8731.3.2024.305505.
Margulies SL, Dhingra I, Flores V, Hecht JL, Fadare O, Pal L, et al. The Diagnostic Criteria for Chronic Endometritis: A Survey of Pathologists. Int J Gynecol Pathol. 2020;(40):556-62. doi: 10.1097/PGP.0000000000000737.
Ryan E, Tolani AT, Zhang J, Cruz GI, Folkins AK, Lathi RB. The menstrual cycle phase impacts the detection of plasma cells and the diagnosis of chronic endometritis in endometrial biopsy specimens. Fertil Steril. 2022;118:787-94. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.07.011.
Weinerman R. COVID-19 and the endometrium: inflammation as understanding. Fertil Steril. 2022;118:1170-1. doi: 10.1016/j.fertnstert.2022.10.034.
Muller M, Kalmeier G, Eyal P, De Bruin A, Pool R, Du Rant C, et al. An endometrial histomorphometric study of CD56+ natural killer cells in women with unexplained infertility. South African J Obst Gynaecol. 2017;23:51-5. doi: 10.7196/sajog.1145.