Тучні клітини у пуповині людини: вплив на характер звивистості
Бічна панель сторінки статті
Основний зміст сторінки статті
Анотація
Аномалії звивистості пуповини по-різному впливають на стан новонародженого. Диференціювання тучних клітин у пуповині відповідно до видів її звивистості також може бути різним.
Мета дослідження: виявлення та підрахунок тучних клітин у пуповині різної звивистості та вивчення їхнього впливу на стан новонароджених.
Матеріали та методи. Зразки пуповин були зібрані у 105 здорових вагітних. Пуповини збирали відразу після пологів і зберігали у формаліні (10%) відповідно до типу звивистості. За даними індексу звивистості пуповини (ІЗП) розрізняли три типи її звивистості – нормальний тип, гіперзвивиста та гіпозвивиста пуповина.
Гістологічні зрізи пуповини були зібрані відповідно до ІЗП. Цей етап виконано за допомогою використання різних гістологічних барвників, включаючи гематоксилін та еозин і толуїдиновий синій. Експресію популяції тучних клітин CD117 у тканині пуповини визначали за допомогою імуногістохімічного методу у субамніотичній, периваскулярній та центральній ділянках. Кількість тучних клітин визначали шляхом прямого підрахунку з використанням програмного забезпечення Image J.
Результати. Порівняння кількості тучних клітин за допомогою Image J продемонструвало статистично значущу відмінність (P<0,05) у їхній кількості між пуповинами з нормальним типом звивистості та гіперзвивистими пуповинами. Не було встановлено значущої відмінності (P>0,05) у кількості тучних клітин між пуповинами з нормальною звивистістю та гіпозвивистими пуповинами.
Висновки. Інтерпретація розподілу тучних клітин засвідчила, що механічна звивистість пуповини під час ембріонального росту впливає на дисперсію цих клітин у перерізаній пуповині. Функціональна значущість цієї інтерпретації повинна застосовуватися до типів звивистості, які не зумовлюють шкідливих наслідків для плода.
У майбутньому можуть бути проведені дослідження розподілу тучних клітин в аномально звивистих пуповинах, пов’язаних із негативними перинатальними результатами.
Блок інформації про статтю
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
Gill RW, Kossoff G, Warren PS, Garrett WJ. Umbilical venous flow in normal and complicated pregnancy. Ultrasound Med Biol. 1984;10(3):349-63. doi: 10.1016/0301-5629(84)90169-8.
Gupta S, Faridi MMA, Krishnan J. Umbilical Coiling Index. J Obstet Gynecol India. 2006;56(4):315-19.
Biradar A, Shreedevi K, Neelamma P, Mudanur SR. Umbilical coiling index and its association with perinatal mortality and morbidity in a low resource tertiary care hospital of northern Karnataka – a prospective observational study. New Ind J OBGYN. 2020;7(1):10-5.
Elieh Ali Komi D, Wöhrl S, Bielory L. Mast Cell Biology at Molecular Level: a Comprehensive Review. Clin Rev Allergy Immunol. 2020;58(3):342-65. doi: 10.1007/s12016-019-08769-2.
Woźniak E, Owczarczyk-Saczonek A, Lange M, Czarny J, Wygonowska E, Placek W, et al. The Role of Mast Cells in the Induction and Maintenance of Inflammation in Selected Skin Diseases. Int J Mol Sci. 2023;24(8):7021. doi: 10.3390/ijms24087021.
Mazreah SA, Shahsavari M, Kalati PA, Mazreah HA. Immunohistochemical evaluation of CD117 in mast cell of aggressive periodontitis. J Indian Soc Periodontol. 2020;24(3):216-20. doi: 10.4103/jisp.jisp_243_19.
Ebbing C, Kessler J, Moster D, Rasmussen S. Single umbilical artery and risk of congenital malformation: population-based study in Norway. Ultrasound Obstet Gynecol. 2020;55(4):510-5. doi: 10.1002/uog.20359.
Schoenwolf Gary C, Bleyl Steve B, Brauer Philip R, Philippa H. Francis-West. Second week: becoming bilaminar and fully implanting. In: Larsen’s human embryology. Philadelphia (PA): Elsevier; 2014, p. 43-56.
Silini AR, Di Pietro R, Lang-Olip I, Alviano F, Banerjee A, Basile M, et al. Perinatal Derivatives: Where Do We Stand? A Roadmap of the Human Placenta and Consensus for Tissue and Cell Nomenclature. Front Bioeng Biotechnol. 2020;8:610544. doi: 10.3389/fbioe.2020.610544.
Chitra T, Sushanth YS, Raghavan S. Umbilical coiling index as a marker of perinatal outcome: an analytical study. Obstet Gynecol Int. 2012;2012:213689. doi: 10.1155/2012/213689.
Cromi A, Ghezzi F, Dürig P, Di Naro E, Raio L. Sonographic umbilical cord morphometry and coiling patterns in twin-twin transfusion syndrome. Prenat Diagn. 2005;25(9):851-5. doi: 10.1002/pd.1273.
Damasceno EB, de Lima PP. Wharton‘s jelly absence: a possible cause of stillbirth. Autops Case Rep. 2013;3(4):43-7. doi: 10.4322/acr.2013.038.
Cheng T, Yang B, Li D, Ma S, Tian Y, Qu R, et al. Wharton’s Jelly Transplantation Improves Neurologic Function in a Rat Model of Traumatic Brain Injury. Cell Mol Neurobiol. 2015;35(5):641-9. doi: 10.1007/s10571-015-0159-9.
Edmonds HW. The spiral twist of the normal umbilical cord in twins and in singletons. Am J Obstet Gynecol. 1954;67(1):102-20. doi: 10.1016/0002-9378(54)90201-x.
Subashini G, Anitha C, Gopinath G, Ramyathangam K. A Longitudinal Analytical Study on Umbilical Cord Coiling Index as a Predictor of Pregnancy Outcome. Cureus. 2023;15(3):e35680. doi: 10.7759/cureus.35680.
Laat MW, Franx A, Bots ML, Visser GH, Nikkels PG. Umbilical coiling index in normal and complicated pregnancies. Obstet Gynecol. 2006;107(5):1049-55. doi: 10.1097/01.AOG.0000209197.84185.15.
Jo YS, Jang DK, Lee G. The sonographic umbilical cord coiling in late second trimester of gestation and perinatal outcomes. Int J Med Sci. 2011;8(7):594-8. doi: 10.7150/ijms.8.594.
Kumar A, Bhat V, Kumar A. Umbilical cord coiling index at term gestation and its association with perinatal outcomes. Ind J Public Health Res Dev. 2022;(13):69-76.
Suvarna S. Kim, Layton Christopher, Bancroft Johan. Bancroft’s Theory and Practice of Histological Techniques: 9th Ed. Elsevier; 2019, p. 173-86.
Frossi B, Mion F, Sibilano R, Danelli L, Pucillo CEM. Is it time for a new classification of mast cells? What do we know about mast cell heterogeneity? Immunol Rev. 2018;282(1):35-46. doi: 10.1111/imr.12636.
Piliponsky AM, Acharya M, Shubin NJ. Mast Cells in Viral, Bacterial, and Fungal Infection Immunity. Int J Mol Sci. 2019;20(12):2851. doi: 10.3390/ijms20122851.
Komi DEA, Khomtchouk K, Santa Maria PL. A Review of the Contribution of Mast Cells in Wound Healing: Involved Molecular and Cellular Mechanisms. Clin Rev Allergy Immunol. 2020;58(3):298-312. doi: 10.1007/s12016-019-08729-w.
Kornstädt L, Pierre S, Weigert A, Ebersberger S, Schäufele TJ, Kolbinger A, et al. Bacterial and Fungal Toll-Like Receptor Activation Elicits Type I IFN Responses in Mast Cells. Front Immunol. 2021;11:607048. doi: 10.3389/fimmu.2020.607048.
Grootens J, Ungerstedt JS, Nilsson G, Dahlin JS. Deciphering the differentiation trajectory from hematopoietic stem cells to mast cells. Blood Adv. 2018;2(17):2273-81. doi: 10.1182/bloodadvances.2018019539.
Stefańska K, Ożegowska K, Hutchings G, Popis M, Moncrieff L, Dompe C, Janowicz K, et al. Human Wharton’s Jelly-Cellular Specificity, Stemness Potency, Animal Models, and Current Application in Human Clinical Trials. J Clin Med. 2020;9(4):1102. doi: 10.3390/jcm9041102.