Роль клініко-імунологічних факторів у результатах процедури екстракорпорального запліднення у жінок
Бічна панель сторінки статті
Основний зміст сторінки статті
Анотація
Мета дослідження: вивчення клініко-імунологічних параметрів у жінок, яким проведено екстракорпоральне запліднення (ЕКЗ), та встановлення зв’язку між цими параметрами та наслідками процедури.
Матеріали та методи. У період з 2020 до 2022 року у Репродуктивному відділенні Caspian International Hospital загалом було обстежено 131 пацієнтку. З них 103 (78,6%) жінки були у віці 19–35 років, 28 (21,4%) – 36–50 років. Дані пацієнток були згруповані та проаналізовані на підставі: результату ЕКЗ (наявність та відсутність запліднення), настання вагітності (наявність або відсутність) і факторів безплідності.
Маркери мононуклеарних клітин периферійної крові (CD16/56 та HLA-DR) були кількісно визначені у 50 жінок. У сироватці крові 84 пацієнток досліджували концентрацію цитокінів – інтерлейкіну-1β (ІЛ-1β), фактора некрозу пухлин-α (ФНП-α) та інтерферону-ɣ (ІФН-ɣ). Усі зразки було взято у день забору ооцитів.
Використовували описові статистичні методи (середнє значення, стандартне відхилення, медіана, частота, відсоток, мінімум і максимум), критерій Стьюдента та U-критерій Манна–Уїтні (для порівняння між двома групами). Ці показники вважали статистично значущими за р<0,05.
Результати. Жіночу безплідність діагностували у 49 (37,4%) пацієнток, 82 (62,6%) жінки були фертильними. Достовірної різниці у рівнях CD16/56 та HLA-DR залежно від статусу вагітності, успіху ЕКЗ та факторів безплідності не відзначено (р>0,05). Показники ІЛ-1β та ІФН-ɣ відрізнялися у сироватці крові пацієнток з вагітністю та без вагітності (p=0,041 та p=0,037 відповідно). Достовірних відмінностей (p>0,05) у рівнях CD16/56, HLA-DR, ІЛ-1β, ФНП-α та ІФН-ɣ між групами за факторами безплідності також не виявлено.
Висновки. Установлено, що існує зв’язок між сироватковими рівнями ІЛ-1β та ІФН-ɣ та успішним перебігом вагітності за використання процедури ЕКЗ. Інших взаємозв’язків між клінічними та імунологічними показниками у жінок, які перенесли процедуру ЕКЗ, не виявлено.
Блок інформації про статтю
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
Sunderam S, Kissin DM, Zhang Y, Jewett A, Boulet SL, Warner L, et al. Assisted Reproductive Technology Surveillance - United States, 2017. MMWR Surveill Summ. 2020;69(9):1-20. doi: 10.15585/mmwr.ss6909a1.
Centers for Disease Control and Prevention (CDC). 2014 Assisted reproductive technology national summary report. Atlanta, GA: CDC; 2016. 78 p.
Jain M, Singh M. Assisted Reproductive Technology (ART) Techniques. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK576409/.
De Geyter C. Assisted reproductive technology: Impact on society and need for surveillance. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2019;33(1):3-8. doi: 10.1016/j.beem.2019.01.004.
Nisal A, Diwekar U, Bhalerao V. Personalized medicine for in vitro fertilization procedure using modeling and optimal control. J Theor Biol. 2020;487:110105. doi: 10.1016/j.jtbi.2019.110105.
van Eekelen R, van Geloven N, van Wely M, Bhattacharya S, van der Veen F, Eijkemans MJ, et al. IVF for unexplained subfertility; whom should we treat? Hum Reprod. 2019;34(7):1249-59. doi: 10.1093/humrep/dez072.
Zhang JJ, Merhi Z, Yang M, Bodri D, Chavez-Badiola A, Repping S, et al. Minimal stimulation IVF vs conventional IVF: a randomized controlled trial. Am J Obstet Gynecol. 2016;214(1):96.e1-8. doi: 10.1016/j.ajog.2015.08.009.
Golyanovskyi O, Zukin V, Shemyakina N, Rubinshtein A. Peculiarities of the course of pregnancy, childbirth and the postpartum period against the background of the use of assisted reproductive technologies. Women’s Reprod Health. 2021;(9-10):79-87. doi: 10.30841/2708-8731.9-10.2021.252598.
Han MT, Cheng W, Zhu R, Wu HH, Ding J, Zhao NN, et al. The cytokine profiles in follicular fluid and reproductive outcomes in women with endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2023;89(6):e13633. doi: 10.1111/aji.13633.
Balaban B, Sakkas D, Gardner DK. Laboratory procedures for human in vitro fertilization. Semin Reprod Med. 2014;32(4):272-82. doi: 10.1055/s-0034-1375179.
Lee I, Ahn SH, Kim HI, Baek HW, Park YJ, Kim H, et al. Cytokines in culture media of preimplantation embryos during in vitro fertilization: Impact on embryo quality. Cytokine. 2021;148:155714. doi: 10.1016/j.cyto.2021.15 5714.
Hyde KJ, Schust DJ. Immunologic challenges of human reproduction: an evolving story. Fertil Steril. 2016;106(3):499-510. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.07.1073.
Chernyshov VP, Sudoma IO, Dons’koi BV, Kostyuchyk AA, Masliy YV. Elevated NK cell cytotoxicity, CD158a expression in NK cells and activated T lymphocytes in peripheral blood of women with IVF failures. Am J Reprod Immunol. 2010;64(1):58-67. doi: 10.1111/j.1600-0897.2010.00825.x.
Sarapik A, Velthut A, Haller-Kikkatalo K, Faure GC, Béné MC, de Carvalho Bittencourt M, et al. Follicular proinflammatory cytokines and chemokines as markers of IVF success. Clin Dev Immunol. 2012;2012:606459. doi: 10.1155/2012/606459.
Fawzy M, Emad M, Elsuity MA, Mahran A, Abdelrahman MY, Fetih AN, et al. Cytokines hold promise for human embryo culture in vitro: results of a randomized clinical trial. Fertil Steril. 2019;112(5):849-57.e1. doi: 10.1016/j.fertnstert.2019.07.012.
Kanannejad Z, Jahromi BN, Gharesi-Fard B. Seminal plasma and CD4+ T-cell cytokine profiles in the in vitro fertilization success. J Res Med Sci. 2020;25:26. doi: 10.4103/jrms.JRMS_238_19.
Kuznetsov L, Dworzynski K, Davies M, Overton C; Guideline Committee. Diagnosis and management of endometriosis: summary of NICE guidance. BMJ. 2017;358:j3935. doi: 10.1136/bmj.j3935.
Farquhar C, Marjoribanks J. Assisted reproductive technology: an overview of Cochrane Reviews. Cochrane Database Syst Rev. 2018;8(8):CD010537. doi: 10.1002/14651858.CD010537.pub5.
Doody KJ. Infertility Treatment Now and in the Future. Obstet Gynecol Clin North Am. 2021;48(4):801-12. doi: 10.1016/j.ogc.2021.07.005.
Ho YK, Chen HH, Huang CC, Lee CI, Lin PY, Lee MS, et al. Peripheral CD56+CD16+ NK Cell Populations in the Early Follicular Phase Are Associated With Successful Clinical Outcomes of Intravenous Immunoglobulin Treatment in Women With Repeated Implantation Failure. Front Endocrinol (Lausanne). 2020;10:937. doi: 10.3389/fendo.2019.00937.
Kogan EA, Rudenko EE, Demura TA, Zharkov NV, Trifonova NS, Bayanova S. Pathomorphological features of the placentas and the placental sites after in vitro fertilization with a donor egg. Arkh Patol. 2020;82(1):23-9. doi: 10.17116/patol20208201123.
van de Veerdonk FL, Netea MG. New Insights in the Immunobiology of IL-1 Family Members. Front Immunol. 2013;4:167. doi: 10.3389/fimmu.2013.00167.
Lekovich J, Witkin SS, Doulaveris G, Orfanelli T, Shulman B, Pereira N, et al. Elevated serum interleukin-1β levels and interleukin-1β-to-interleukin-1 receptor antagonist ratio 1 week after embryo transfer are associated with ectopic pregnancy. Fertil Steril. 2015;104(5):1190-4. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.07.1145.
Kreines FM, Nasioudis D, Minis E, Irani M, Witkin SS, Spandorfer S. IL-1β predicts IVF outcome: a prospective study. J Assist Reprod Genet. 2018;35(11):2031-5. doi: 10.1007/s10815-018-1296-0.
Liang PY, Diao LH, Huang CY, Lian RC, Chen X, Li GG, et al. The pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokine profile in peripheral blood of women with recurrent implantation failure. Reprod Biomed Online. 2015;31(6):823-6. doi: 10.1016/j.rbmo.2015.08.009.