Пробіотики як необхідна складова комплексної терапії порушень мікробіоценозу нижнього рівня органів репродуктивної системи у жінок фертильного віку
Бічна панель сторінки статті
Основний зміст сторінки статті
Анотація
Мета дослідження: визначення особливостей кількісного та якісного складу мікроорганізмів при запальних захворюваннях статевих органів нижнього рівня, вивчення особливостей мікробіоценозу залежно від наявності або відсутності активності вірусу герпесу 2-го типу та оцінювання ефективності застосування пробіотика у комплексній терапії зазначеної патології.
Матеріали та методи. Проведено обстеження 60 жінок фертильного віку, які були розподілені на три групи: до першої групи увійшли 20 жінок із запальними захворюваннями статевих органів нижнього рівня зі змінами мікробіоценозу за наявності активності вірусу герпесу 2-го типу, до другої групи – 20 жінок із запальними захворюваннями статевих органів нижнього рівня зі змінами мікробіоценозу за відсутності активності вірусу герпесу 2-го типу, до третьої (контрольної) групи – 20 здорових жінок.
Вивчення мікробіоценозу статевих органів включало визначення видового та кількісного складу мікрофлори за допомогою культурального методу. Усі пацієнтки отримували комплексну терапію порушень мікробіоценозу при запальних захворювання статевих органів нижнього рівня з додатковим призначенням вагінального пробіотика, який містить lactobacillus plantarum (100) і не менш ніж 100 млн корисних мікроорганізмів.
Результати. Проведені дослідження стану мікробіоценозу статевих органів нижнього рівня у жінок фертильного віку з виявленим активним вірусом герпесу 2-го типу до лікування (перша група) продемонстрували підвищення титрів умовно-патогенної мікрофлори та зменшення кількості лактобацил. У жінок із запальними захворюваннями статевих органів нижнього рівня зі змінами мікробіоценозу за відсутності активності вірусу герпесу 2-го типу основними причинами порушення мікробіому нижнього рівня статевих органів було збільшення колоній таких мікроорганізмів, як стафілокок епідермальний, стрептокок зеленявий, коринебактерії, ентеробактер та гриби роду Candida, що супроводжувалось зменшенням кількості лактобацил.
На фоні лікування у жінок першої та другої груп відзначено зростання концентрації лактобацил до рівня здорових пацієнток.
Висновки. Мікробіота нижніх відділів генітального тракту у фертильних жінок із запальними процесами статевих органів має відмінности у складі умовно-патогенних мікроорганізмів залежно від наявності вірусу герпесу 2-го типу та супроводжується зниженням концентрації лактобацил. Застосування пробіотика, який містить lactobacillus plantarum (100) і не менш ніж 100 млн корисних мікроорганізмів, у комплексній терапії зазначеної патології є ефективним методом відновлення нормальної мікробіоти.
Блок інформації про статтю
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
Abdelmaksoud AA, Girerd PH, Garcia EM, Brooks JP, Leftwich LM, Sheth NU, et al. Association between statin use, the vaginal microbiome, and Gardnerella vaginalis vaginolysin-mediated cytotoxicity. PLoS One. 2017;12(8):e0183765. doi: 10.1371/journal.pone.0183765.
Anahtar MN, Byrne EH, Doherty KE, Bowman BA, Yamamoto HS, Soumillon M, et al. Cervicovaginal bacteria are a major modulator of host inflammatory responses in the female genital tract. Immunity. 2015;42(5):965-76. doi: 10.1016/j.immuni.2015.04.019.
Brooks JP, Buck GA, Chen G, Diao L, Edwards DJ, Fettweis JM, et al. Changes in vaginal community state types reflect major shifts in the microbiome. Microb Ecol Health Dis. 2017;28(1):1303265. doi: 10.1080/16512235.2017.1303265.
Cherpes TL, Hillier SL, Meyn LA, Busch JL, Krohn MA. A delicate balance: risk factors for acquisition of bacterial vaginosis include sexual activity, absence of hydrogen peroxide-producing lactobacilli, black race, and positive herpes simplex virus type 2 serology. Sex Transm Dis. 2008;35(1):78-83. doi: 10.1097/OLQ.0b013e318156a5d0.
Dezzutti CS, Hendrix CW, Marrazzo JM, Pan Z, Wang L, Louissaint N, et al. Performance of swabs, lavage, and diluents to quantify biomarkers of female genital tract soluble mucosal mediators. PLoS One. 2011;6(8):e23136. doi: 10.1371/journal.pone.0023136.
Esber A, Vicetti Miguel RD, Cherpes TL, Klebanoff MA, Gallo MF, Turner AN. Risk of Bacterial Vaginosis Among Women With Herpes Simplex Virus Type 2 Infection: A Systematic Review and Meta-analysis. J Infect Dis. 2015 Jul 1;212(1):8-17. doi: 10.1093/infdis/jiv017.
Fredricks DN, Fiedler TL, Marrazzo JM. Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N Engl J Med. 2005;353(18):1899-911. doi: 10.1056/NEJMoa043802.
Kaul R, Nagelkerke NJ, Kimani J, Ngugi E, Bwayo JJ, Macdonald KS, et al. Prevalent herpes simplex virus type 2 infection is associated with altered vaginal flora and an increased susceptibility to multiple sexually transmitted infections. J Infect Dis. 2007;196(11):1692-7. doi: 10.1086/522006.
Kalyoussef S, Nieves E, Dinerman E, Carpenter C, Shankar V, Oh J, et al. Lactobacillus proteins are associated with the bactericidal activity against E. coli of female genital tract secretions. PLoS One. 2012;7(11):e49506. doi: 10.1371/journal.pone.0049506.
Keller MJ, Huber A, Espinoza L, Serrano MG, Parikh HI, Buck GA, et al. Impact of Herpes Simplex Virus Type 2 and Human Immunodeficiency Virus Dual Infection on Female Genital Tract Mucosal Immunity and the Vaginal Microbiome. J Infect Dis. 2019;220(5):852-61. doi: 10.1093/infdis/jiz203.
Keller MJ, Madan RP, Shust G, Carpenter CA, Torres NM, Cho S, et al. Changes in the soluble mucosal immune environment during genital herpes outbreaks. J Acquir Immune Defic Syndr. 2012;61(2):194-202. doi: 10.1097/QAI.0b013e31826867ae.
Koelle DM, Wald A. Herpes simplex virus: the importance of asymptomatic shedding. J Antimicrob Chemother. 2000;45 Suppl T3:1-8. doi: 10.1093/jac/45.suppl_4.1.
Lennard K, Dabee S, Barnabas SL, Havyarimana E, Blakney A, Jaumdally SZ, et al. Microbial Composition Predicts Genital Tract Inflammation and Persistent Bacterial Vaginosis in South African Adolescent Females. Infect Immun. 2017;86(1):e00410-17. doi: 10.1128/IAI.00410-17.
Masese L, Baeten JM, Richardson BA, Bukusi E, John-Stewart G, Jaoko W, et al. Incident herpes simplex virus type 2 infection increases the risk of subsequent episodes of bacterial vaginosis. J Infect Dis. 2014;209(7):1023-7. doi: 10.1093/infdis/jit634.
Nugent RP, Krohn MA, Hillier SL. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of gram stain interpretation. J Clin Microbiol. 1991;29(2):297-301. doi: 10.1128/jcm.29.2.297-301.1991.
Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SS, McCulle SL, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108 Suppl 1(Suppl 1):4680-7. doi: 10.1073/pnas.1002611107.
Schiffer JT, Swan D, Al Sallaq R, Magaret A, Johnston C, Mark KE, et al. Rapid localized spread and immunologic containment define Herpes simplex virus-2 reactivation in the human genital tract. Elife. 2013;2:e00288.
Shannon B, Gajer P, Yi TJ, Ma B, Humphrys MS, Thomas-Pavanel J, et al. Distinct Effects of the Cervicovaginal Microbiota and Herpes Simplex Type 2 Infection on Female Genital Tract Immunology. J Infect Dis. 2017;215(9):1366-75. doi: 10.1093/infdis/jix088.
Shust GF, Cho S, Kim M, Madan RP, Guzman EM, Pollack M, et al. Female genital tract secretions inhibit herpes simplex virus infection: correlation with soluble mucosal immune mediators and impact of hormonal contraception. Am J Reprod Immunol. 2010;63(2):110-9. doi: 10.1111/j.1600-0897.2009.00768.x.
Tronstein E, Johnston C, Huang ML, Selke S, Magaret A, Warren T, et al. Genital shedding of herpes simplex virus among symptomatic and asymptomatic persons with HSV-2 infection. JAMA. 2011;305(14):1441-9. doi: 10.1001/jama.2011.420.
Ursell LK, Gunawardana M, Chang S, Mullen M, Moss JA, Herold BC, et al. Comparison of the vaginal microbial communities in women with recurrent genital HSV receiving acyclovir intravaginal rings. Antiviral Res. 2014;102:87-94. doi: 10.1016/j.antiviral.2013.12.004.
Valore EV, Park CH, Igreti SL, Ganz T. Antimicrobial components of vaginal fluid. Am J Obstet Gynecol. 2002;187(3):561-8. doi: 10.1067/mob.2002.125280.
Zhou X, Brown CJ, Abdo Z, Davis CC, Hansmann MA, Joyce P, et al. Differences in the composition of vaginal microbial communities found in healthy Caucasian and black women. ISME J. 2007;1(2):121-33. doi: 10.1038/ismej.2007.12.
Podolsky VV, Podolsky VV, Lisyana TO, Ponomaryova IG. Microbiocenosis of urogenital organs in women of childbearing age with disorders of vegetative homeostasis and changes in reproductive health. In: Materials of the International Science-Practice Conf. Innovative technologies of infection control: disinfection, sterilization, monitoring of nosocomial infections, rational use of antimicrobial drugs, antimicrobial resistance. 2015 April 20; Kyiv. Kyiv: Agrar Media Group; 2015, p. 92-101.
Zaporozhian VM, Podolsky VV. Reproductive health of women with chronic inflammatory diseases of the genital organs. Kyiv; 2014. 197 p.
Podolsky VV, Lisyana TO, Ponomaryova IG. The state of microbiocenosis of urogenital organs in women with impaired reproductive health and changes in vegetative homeostasis. Women’s Health. 2015;98(2):142-50.
Podolsky VV, Podolsky VV. Peculiarities of changes in the vaginal microbiota in women of childbearing age, as a possible mechanism of chronic inflammatory diseases of the genital organs and modern possibilities of correction. Women’s Health. 2020;148(2):50-2.